ردیابی مولکولی آدنوویروس‌های ماکیان مرتبط با رخداد بیماری هپاتیت همراه با گنجیدگی در مزارع مرغ گوشتی استان‌های مازندران، فارس و تهران

میرزازاده قصاب, امین; مصلح, نجمه; اساسی, کرامت; عباس نیا, محمد; عبدی هاچسو, بهمن

doi:10.22092/vj.2021.351843.1767

ردیابی مولکولی آدنوویروس‌های ماکیان مرتبط با رخداد بیماری هپاتیت همراه با گنجیدگی در مزارع مرغ گوشتی استان‌های مازندران، فارس و تهران

نوع مقاله : مقاله کامل

نویسندگان

گروه علوم درمانگاهی دانشکده دامپزشکی دانشگاه شیراز، شیراز، ایران

10.22092/vj.2021.351843.1767

چکیده

بیماری هپاتیت همراه با گنجیدگی با عامل آدنوویروس‌های ماکیان، به دلیل ایجاد تلفات در مزارع گوشتی از بیماری‌های مهم در صنعت طیور محسوب می‌شود. مطالعه حاضر به منظور ردیابی و طبقه‌بندی مولکولی آدنوویروس‌های ماکیان مرتبط بارخداد‌های بیماری هپاتیت همراه با گنجیدگی در مزارع مرغ گوشتی کشور انجام شد. در یک بازه زمانی 3 ساله، 22 رخداد بیماری در مزارع با سنین 7 تا 42 روزگی در استان‌های مازندران، فارس و تهران به ثبت رسید. در هر مورد بعد از اخذ تاریخچه و ثبت جراحات کالبدگشایی، نمونه‌های ویروس‌شناسی و آسیب‌شناسی از بافت کبد پرندگان بیمار اخذ شد. بررسی ویروس‌شناسی با انجام آزمون زنجیره پلی‌مراز در زمان حقیقی بر روی ژن 52K آدنوویروس‌های ماکیان و بررسی میکروسکوپی بافت کبد بعد از رنگ‌آمیزی هماتوکسیلین و ائوزین انجام شد. بررسی آسیب‌شناسی بافت کبد نشان‌دهنده بروز هپاتیت نکروزان به همراه حضور گنجیدگی‌های داخل هسته‌ای، منتسب به آدنوویروس‌های ماکیان، بود. آزمون مولکولی و بررسی سکانس توالی نوکلئوتیدی ژن 52K، نشان از نقش 19گونه D و 3 گونه E آدنوویروس‌های ماکیان در رخداد‌های بیماری هپاتیت به همراه گنجیدگی داشت. مطالعه حاضر نشان‌دهنده نقش غالب گونه‌های D و E آدنوویروس‌های ماکیان در ایجاد بیماری هپاتیت به همراه گنجیدگی می‌باشد. با توجه به گستردگی صنعت طیور کشور، یافته‌های همه‌گیر‌شناسی مطالعه حاضر در استان‌های مذکور می‌تواند در جهت کنترل و پیشگیری از این بیماری درکشور مفید واقع شود.

کلیدواژه‌ها

20.1001.1.24235407.1401.35.1.6.5

عنوان مقاله [English]

Molecular detection of fowl adenoviruses associated with inclusion body hepatitis outbreaks in broiler flocks of Mazandaran, Fars, and Tehran provinces

نویسندگان [English]

A Mirzazadeh ghassab
N Mosleh
K Asasi
M. Abbasnia
B Abdi Hachesoo

Department of Clinical Sciences, Faculty of Veterinary Medicine, Shiraz University, Shiraz, Iran

چکیده [English]

Inclusion body hepatitis (IBH) with the causative agent of fowl adenoviruses (FAdVs), due to incurring mortality in broiler farms, is considered a significant disease in the poultry industry. The present study was undertaken to detect and molecularly classify FAdV associated with outbreaks of IBH in broiler farms in Iran. Over 3 years, twenty-two outbreaks of IBH, in farms with ages between 7 to 42 days, were recorded in Mazandaran, Fars, and Tehran provinces. In each case, after taking history and recording gross lesions, virological and histopathological samples were obtained from the liver of the affected birds. The virological investigation was carried out by a real-time PCR targeting the 52k gene of FAdV and microscopic investigation of liver tissue was performed after hematoxylin and eosin staining. Histopathological investigation of liver tissue showed necrotizing hepatitis with the presence of intranuclear inclusion bodies attributed to FAdV infection. The molecular assay combined with sequencing analysis of the 52k gene revealed the involvement of 19 FAdV-D and 3 FAdV-E in IBH outbreaks. The present study is indicative of a prominent involvement of FAdV-D and -E in IBH outbreaks. Due to the vastness of the country's poultry industry, the epidemiological findings of the present study in the mentioned provinces could be advantageous for the control and prevention of this disease in the country.

کلیدواژه‌ها [English]

Fowl adenoviruses
Inclusion body hepatitis
broilers
Iran

مراجع

1- Arazi, S., M. Mayahi, F.Talazadeh,Z. Boroomand and R. A. Jafari.2020. Molecular identification of aviadenoviruses in broiler chickens suspected to inclusion body hepatitis in Golestan province, Iran. Iranian Journal of Veterinary Research 21: 198.
2. Boroomand, Z., M.Mayahi,A. Rezaie andM. Ghorbiani. 2020. Molecular detection of Fowl adenoviruses in broiler chickens suspected of inclusion body hepatitis in Markazi and Qom provinces, Iran. Veterinary Research and Biological Products129: 2-9.
3- Günes, A., A. Marek, B. Grafl, E.Berger andM. Hess. 2012. Real-time PCR assay for universal detection and quantitation of all five species of fowl adenoviruses (FAdV-A to FAdV-E). Journal of virological methods 183:147-153.
4-Helmboldt, C. F., and M. N. Frazier. 1963. Avian hepatic inclusion bodies of unknown significance. Avian diseases 7: 446-450.
5-Hess, M.2020. Aviadenovirus infections.pp. 322–332. In:Diseases of Poultry, D.E. Swayne, M .Boulianne, C. M. Logue, L. R. McDougald, V . Nairand D. L. Suarez (Eds.). Wiley-Blackwell: Ames.
6- Hosseini, H andR. Morshed.2012. Molecular identification of fowl adenovirus associated with inclusion body hepatitis in Iran. Iranian Journal of virology 6: 7-12.
7- Kaján, G., S. Sameti and M. Benkő.2011. Partial sequence of the DNA-dependent DNA polymerase gene of fowl adenoviruses: a reference panel for a general diagnostic PCR in poultry. Acta Veterinaria Hungarica 59: 279-285.
8- Khodakaram-Tafti, A., K. Asasi and F. Namazi.2016. Clinicopathologicalcharacteristics of acute inclusion body hepatitis outbreak in broiler chickens in Iran. Bulgarian Journal of Veterinary Medicine 19:.163-168.
9- Lim, T. H., H. J. Lee, D. H.Lee, Y. N.Lee, J. K.Park, H. N.Youn, M. S. Kim, H. S. Youn, J. B. Lee, S. Y. Park, I. S. Choi and C. S. Song.2011. Identification and virulence characterization of fowl adenoviruses in Korea. Avian diseases 55: 554-560.
10- Marek, A., A. Günes, E.Schulz andM. Hess.2010. Classification of fowl adenoviruses by use of phylogenetic analysis and high-resolution melting-curve analysis of the hexon L1 gene region. Journal of virological methods 170 : 147-154.
11-McFerran, J. B and J. A. Smyth.2000. Avian adenoviruses. Revue Scientifique et Technique-Office International des Epizooties 19: 589-598.
12- Meulemans, G., M. Boschmans, T. P. Van den Berg andM. Decaesstecker. 2001. Polymerase chain reaction combined with restriction enzyme analysis for detection and differentiation of fowl adenoviruses. Avian Pathology 30: 655-660.
13- Morshed, R., H. Hosseini, A. G. Langeroudi, M. H. B. Fard andS. Charkhkar.2017. Fowl adenoviruses D and E cause inclusion body hepatitis outbreaks in broiler and broiler breeder pullet flocks. Avian diseases 61: 205-210.
14- Nateghi, E., J. Razmyar andM. R. Bassami.2014. Molecular characterization of avian adenoviruses in Iranian broiler flocks. Iranian Journal of Veterinary Research 15: 164-167.
15- Oliver-Ferrando, S., R. Dolz, C. Calderón, R. Valle, R. Rivas, M. Pérez, M. Biarnés, A. Blanco, K. Bertran, A. Ramis and N. Busquets. 2017. Epidemiological and pathological investigation of fowl aviadenovirus serotypes 8b and 11 isolated from chickens with inclusion body hepatitis in Spain (2011–2013). Avian pathology 46: 157-165.
16- Şahindokuyucu, İ., F. Çöven, H. Kılıç, Ö. Yılmaz, M. Kars, Ö. Yazıcıoğlu and E. Ertunç. 2020. First report of fowl aviadenovirus serotypes FAdV-8b and FAdV-11 associated with inclusion body hepatitis in commercial broiler and broiler-breeder flocks in Turkey. Archives of virology 165: 43-51.
17- Schachner, A., A. Marek, B. Grafl and M. Hess.2016. Detailed molecular analyses of the hexon loop-1 and fibers of fowl aviadenoviruses reveal new insights into the antigenic relationship and confirm that specific genotypes are involved in field outbreaks of inclusion body hepatitis. Veterinary microbiology 186: 13-20.
18- Schachner, A., M. Matos, B. Grafl and M. Hess.2018. Fowl adenovirus-induced diseases and strategies for their control–a review on the current global situation. Avian pathology 47: 111-126.
19- Steer, P. A., D. O'rourke, S. A. Ghorashi andA. H. Noormohammadi.2011. Application of high‐resolution melting curve analysis for typing of fowl adenoviruses in field cases of inclusion body hepatitis. Australian veterinary journal 89: 184-192.
20- Zsák, L and J. Kisary.1984. Grouping of fowl adenoviruses based upon the restriction patterns of DNA generated by BamHI and HindIII. Intervirology 22: 110-114.