جداسازی، شناسایی، تعیین سروتیپها و بررسی مقاومت آنتی‌بیوتیکی سالمونلاهای طیور در چند مرغداری استان خوزستان

نوع مقاله : مقاله کامل

نویسندگان

1 مؤسسه تحقیقات واکسن و سرم سازی رازی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، اراک، ایران

2 بخش میکروب شناسی، موسسه تحقیقات واکسن و سرم سازی رازی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران

3 موسسه تحقیقات واکسن و سرم سازی رازی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، اهواز، ایران

4 بخش باکتری های هوازی، موسسه تحقیقات واکسن و سرم سازی رازی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران

5 موسسه تحقیقات واکسن و سرم سازی رازی، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، اراک ایران

چکیده

گونه‌های مختلف سالمونلا جزء باکتری‌های بیماری‌زای مهم در حیوانات و انسان می‌باشند که غالبا گله‌های طیور را آلوده می‌نمایند. بیشتر عفونت‌های سالمونلایی در انسان در اثر مصرف مواد غذایی آلوده به این باکتری اتفاق می‌افتد. هدف از این مطالعه تعیین وضعیت آلودگی سالمونلایی در چند مرغداری استان خوزستان و تعیین سروتیپ‌ها و تعیین الگوی مقاومت آنتی‌بیوتیکی سالمونلاهای جدا شده بود. در سال 1392 تعداد 1829 نمونه شامل سواب مدفوع، نمونه بستر، پر و پوسته تخم‌مرغ از یک مزرعه مرغ مادر گوشتی، دو مزرعه مرغ مادر تخم‌گذار و یک کارخانه جوجه‌کشی جمع‌آوری شد و بر اساس روش‌های استاندارد در محیط‌های غنی‌کننده و انتخابی سالمونلاها کشت داده شده و با استفاده از آزمون‌های بیوشیمیایی تشخیص داده شدند. در این مطالعه تعداد 10 جدایه سالمونلا جداسازی گردید و با استفاده از آزمایش‌های تعیین نوع سرمی سالمونلا سروتیپ‌های entritidis (سه مورد)، corvallis (سه مورد)، typhimurium (سه مورد) و ruzizi (یک مورد) مورد شناسایی قرار گرفت. پس از انجام آزمایش آنتی‌بیوگرام با روش استاندارد دیسک دیفیوژن مشخص گردید که 100 % جدایه‌ها نسبت به کلیستین، سفازولین و سفالکسین مقاوم بودند. جدایه‌ها نسبت به سفتازیدیم، نالیدیکسیک اسید، آمپی‌سیلین، سیپروفلوکسازین، نیتروفورانتوئین، آموکسی‌سیلین، نئومایسین، استرپتومایسین، کانامایسین، سفتی‌زوکسیم، جنتامایسین و تتراسایکلین مقاومت زیادی نشان دادند. همه جدایه‌های سالمونلا در این تحقیق نسبت به آمیکاسین، انروفلوکسازین، سفتریاکسون، ایمیپنم، سفکسیم، سفوتاکسیم، افلوکسازین، سفپیم، پیپراسیلین، فلورفنیکل، فورازولیدن، کلرامفنیکل و تری‌متوپریم سولفامتوکسازول دارای حساسیت بودند.

کلیدواژه‌ها

عنوان مقاله [English]

Isolation, Identification, Determination of Serotypes and Evaluation of Antibiotic Resistance of Poultry Salmonella in Khuzestan Province

نویسندگان [English]

  • sh. ghaemmaghami 1
  • S. Moradi Bidhendi 2
  • P. Khaki 2
  • A. Mohammadian 3
  • F. Kavosh 3
  • R. Ghaderi 4
  • A. Hamidi 5
1 Razi Vaccine & Serum Research Institute, Agricultural Research, Education & Extension Organization (AREEO), Arak, Iran
2 Department of Microbiology, Razi Vaccine and Serum Research Institute, Agricultural Research, Education & Extension Organization (AREEO), Karaj, Iran
3 Razi Vaccine and Serum Research Institute, Agricultural Research, Education & Extension Organization (AREEO), Ahvaz, Iran
4 Department of Aerobic Bacteria, Razi Vaccine and Serum Research Institute Agricultural Research, Education & Extension Organization (AREEO), Karaj, Iran
5 Razi Vaccine & Serum Research Institute, Agricultural Research, Education & Extension Organization (AREEO), Arak, Iran
چکیده [English]

Different species of Salmonella are important pathogenic bacteria in animals and humans that often infect poultry flocks. Most Salmonella infections in humans are caused by eating foods contaminated with this bacterium. The aim of this study was to determine the Salmonella infection status of several poultry farms in Khuzestan province and to determine the serotypes and antimicrobial resistance pattern of isolated Salmonella. In the year 1392 total of 1829 samples including stool swabs, litter samples, feathers and eggshells were collected from a broiler mother farm, two laying mother hen farms and an incubator and cultured in enriching and selective media and detected using biochemical tests according to standard methods. In this study, 10 Salmonella isolates were isolated including serotypes enteritidis (3 cases), corvallis (3 cases), typhimurium (3 cases) and ruzizi (1 case) using Salmonella serum type tests. After performing antibiogram test with standard disk diffusion method, it was determined that 100% of the isolates were resistant to Colistin, Cefalexin and Cefazolin. Isolates were highly resistant to Ceftazidime, Nalidixic acid, Ampicillin, Ciprofloxacin, Nitrofurantoin, Amoxicillin, Neomycin, Streptomycin, Kanamycin, Ceftizoxime, Gentamicin and Tetracycline. All Salmonella isolates in this study were sensitive to Amikacin, Enrofloxacin, Ceftriaxone, Imipenem, Cefixime, Cefotaxime, Ofloxacin, Cefepime, Piperacillin, Florfenicol, Furazolidone, Chloramphenicol and Trimethoprim- Sulfamethoxazole.

کلیدواژه‌ها [English]

  • Salmonella
  • poultry flocks
  • antibiotic resistance
  • Khuzestan province

مراجع

1- Asadpour, Y., Mohammadi, M., Pourbakhsh, S. A., and Rasa, M. 2013. Isolation, serotyping and antibiotic resistance of Salmonella isolated from chicken carcasses in Guilan province. Iranian Veterinary Journal 9: 5-13.
2- Brenner, F., R. Villar, F. Angulo, R. Tauxe and B. Swaminathan. 2000. Salmonella nomenclature. Journal of clinical microbiology 38: 2465-2467.
3- Capita, R., C. Alonso‐Calleja and M. Prieto. 2007. Prevalence of Salmonella enterica serovars and genovars from chicken carcasses in slaughterhouses in Spain. Journal of Applied Microbiology 103: 1366-1375.
4- Emaddi Chashni, S. H., Hassanzadeh, M., Bozorgmehri Fard, M.H., and Mirzaie, S. 2009. Characterization of the Salmonella isolates from Backyard Chickens in North of Iran by serotyping, multiplex PCR and Antibiotic Resistance Analysis. Archives of Razi Institute 64, 77-83.
5- Eram, N., Peighambari, S. M., and Yazdani, A. 2013. Study on Salmonella spp. in broiler farms around Ghaemshahr: Determination of serotypes and their drugs resistance. Journal of Veterinary Laboratory Research 5, 85-94.
6- Gantois, I., R. Ducatelle, F. Pasmans, F. Haesebrouck, R. and Gast, T. J. Humphrey and F. Van Immerseel. 2009. Mechanisms of egg contamination by Salmonella enteritidis. FEMS microbiology reviews 33: 718-738.
7- Gelaw, A. K., P. Nthaba and I. Matle. 2018. Detection of Salmonella from animal sources in South Africa between 2007 and 2014. Journal of the South African Veterinary Association 89: 1-10.
8- Gole, V. C., R. Woodhouse, C. Caraguel, T. Moyle, J.-L. Rault, M. Sexton and K. Chousalkar. 2017. Dynamics of Salmonella shedding and welfare of hens in free-range egg production systems. Applied and environmental microbiology 83: 1-17.
9- Gutierrez, M., J. Fanning, A. Murphy, G. Murray, M. Griffin, A. Flack, N. Leonard and J. Egan. 2009. Salmonella 
in broiler flocks in the republic of Ireland. Foodborne Pathogens and disease 6: 111-130.
10- Khaki, P., Bidhendi, S. M., and Ezatpanah, E. 2013. PCR-RFLP of isolated Salmonella from poultry with sau3AI and HhaI restriction endonucleases in Arak. International Journal of Molecular and Clinical Microbiology 1, 255-260.
11- Liao, J., R. H. Orsi, L. M. Carroll, J. Kovac, H. Ou, H. Zhang and M. Wiedmann. 2019. Serotype-specific evolutionary patterns of antimicrobial-resistant Salmonella enterica. BMC evolutionary biology 19: 1-20.
12- Lokken, K. L., G. T. Walker and R. M. Tsolis. 2016. Disseminated infections with antibiotic-resistant non-typhoidal Salmonella strains: contributions of host and pathogen factors. FEMS Pathogens and Disease 74: 1-9.
13- Mamber, S., and Katz, S. 1985. Effects of Antimicrobial Agents Fed to chickens on some Gram Negative Enteric Bacilli. Appl and Env Microbiol. 50: 638-648.
14- McDermott, P. F. 2005. Antimicrobial resistance in nontyphoidal Salmonella. Antimicrobial resistance in bacteria of animal origin 15: 293-314.
15- McWhorter, A. R. and K. K. Chousalkar. 2019. From hatch to egg grading: monitoring of Salmonella shedding in free-range egg production systems. Veterinary research 50: 58-69.
16- McWhorter, A. R., D. Davos and K. K. Chousalkar. 2015. Pathogenicity of Salmonella strains isolated from egg shells and the layer farm environment in Australia. Applied and Environmental Microbiology 81: 405-414.
17- Moradi Bidhendi, S. 2015. A review of studies on isolation, diagnosis and antimicrobial resistance of Salmonella in Iran .Veterinary Journal (Pajouhesh & Sazandegi) 109: 21-30.
18- Peng, M., S. Salaheen, R. L. Buchanan and D. Biswas. 2018. Alterations of Salmonella enterica serovar typhimurium antibiotic resistance under environmental pressure. Applied and environmental microbiology 84: 1-14.
19- Pooladgar, A. A., Yousefi, J. V., and Nemati, M. 2010. Salmonellosis in Ahwaz poultry farms-southwest of Iran. Journal of Experimental Zoology India 13, 503-507.
20- Rad, M., Kelidari, Gh., and Kordjaz, Sh. 2007. Identification of Salmonella spp. in a Native Poultry Breeding and Improvement Center. Pajouhesh & Sazandegi 81, 87-93.
21- Ranjbar Malidareh, N., Firouzi, S., and Habibi, H. 2013. In vitro and In vivo susceptibility of Salmonella spp. isolated from broiler chicken. Comparative Clinical Pathology 22, 1065-1068.
22- Shang, K., B. Wei and M. Kang. 2018. Distribution and dissemination of antimicrobial-resistant Salmonella in broiler farms with or without enrofloxacin use. BMC veterinary research 14: 1-14.
23- Sodagari, H. R., P. Wang, I. Robertson, I. Habib and S. Sahibzada. 2020. Non-Typhoidal Salmonella at the Human-Food-of-Animal-Origin Interface in Australia. Animals 10: 1-33.
24- VT Nair, D., K. Venkitanarayanan and A. Kollanoor Johny. 2018. Antibiotic-resistant Salmonella in the food supply and the potential role of antibiotic alternatives for control. Foods 7: 1-24.
25- Wang, M., I. H. Qazi, L. Wang, G. Zhou and H. Han. 
2020. Salmonella Virulence and Immune Escape. Microorganisms 8: 1-25.

فایل ها

سابقه مقاله

  • تاریخ دریافت: 15 مهر 1399
  • تاریخ بازنگری: 24 آذر 1399
  • تاریخ پذیرش: 26 آذر 1399

هم رسانی

ارجاع به این مقاله

آمار