تغییرات بافت شیردان در آلودگی طبیعی با مراحل نوزادی و بالغ نماتود‌ها در گوسفندان نژاد کردی استان ایلام

نوع مقاله : مقاله کامل

نویسندگان

1 گروه پاتوبیولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران

2 گروه پاتولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه تهران، تهران، ایران

3 گروه میکروبیولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه ایلام، ایلام، ایران

چکیده

آلودگی‌های انگلی نماتودها در شیردان گوسفند دارای اهمیت اقتصادی در سراسر جهان و ایران است. هدف از این مطالعه بررسی تغییرات آسیب‌شناسی بافت شیردان در گوسفندان با آلودگی طبیعی به مراحل نوزادی و بالغ نماتودها بود. به این منظور تعداد 240 عدد شیردان گوسفندان کشتار شده در کشتارگاه صنعتی استان ایلام (1397-1398) جهت بررسی هر گونه ضایعه بافتی ماکروسکوپی به روش نمونه‌گیری تصادفی ساده جمع‌آوری شدند. نماتودها از مخاط شیردان جدا گردیدند و بر اساس مشخصات ریخت‌شناسی شناسایی شدند. از هر شیردان قطعه‌ای به ابعاد 1×2×2 سانتی‌متر مکعب برای مطالعه ریزبینی و ضایعات بافتی تهیه شد و در فرمالین 10% ثابت گردید. پس از تهیه مقاطع بافتی به ضخامت 6 میکرون بوسیله میکروتوم به روش هماتوکسیلین-ائوزین رنگ‌آمیزی و با میکروسکوپ نوری ارزیابی آسیب‌شناسی شدند. تعداد 160 شیردان (7/66%) آلوده به گونه‌های Marshallagia marshalli (65/43%)، Marshallagia occidentalis  (5/2%)، Ostertagia circumcincta (5/15%)، Haemonchus contortus (04/0%) و Parabronema skrjabini (5%) بودند. در مطالعه آسیب‌شناسی مخاط شیردان، با از بین رفتن سلول‌های پاریتال و جایگزین شدن آن‌ها توسط سلول‌های موکوسی؛ دچار هیپرپلازی و طویل شدن غدد و نیز افزایش ضخامت مخاط شده بود. نفوذ تعداد قابل توجهی از سلول‌های التهابی با غلبه سلول‌های تک‌هسته‌ای به همراه ائوزینوفیل‌ها در بافت همبند پارین مخاط و اطراف غدد حاوی مقاطعی از نوزاد نماتودها بیانگر بروز گاستریت هیپرتروفیک مزمن بود. با توجه به یافته‌های آسیب‌شناسی آلودگی کرمی بافت شیردان با نماتودها در گوسفندان منطقه، مطالعات تکمیلی به منظور شناسایی و کاهش ضایعات شیردانی و خسارات اقتصادی توصیه می‌گردد.

کلیدواژه‌ها


عنوان مقاله [English]

Histologic changes of abomasum due to larvae and adult stages of nematodes in naturally infected Kurdish sheep in Ilam province, West of Iran

نویسندگان [English]

  • M. Nazarbeigy 1
  • M. Yakhchali 1
  • S. H. Marjanmehr 2
  • F. Pourahmad 3
1 Department of Pathobiology, Faculty of Veterinary Medicine, Urmia University, Urmia, Iran
2 Department of Pathology, Faculty of Veterinary Medicine, University of Tehran, Tehran, Iran
3 Department of Microbiology, Faculty of Veterinary Sciences, Ilam University, Ilam, Iran.
چکیده [English]

Nematodes infections in sheep abomasum are the importance of economic and public health throughout the world and Iran. The current study was aimed to study histopathologic changes due to larvae and adult stages of nematodes in abomasum of naturally infected Kurdish sheep. For this purpose, a total numbers of 240 abomasa of slaughtered sheep from Ilam industrial slaughterhouse (2018-2019) were randomly collected for gross lesions and microscopic observations. Nematodes were removed and identified based on morphological characteristics. For histologic observations, a cube piece of each abomasum tissue (1 × 2 × 2 cm3) were prepared and fixed in 10% buffered formalin. Then sections (6 μm) were prepared using microtome and stained with Hematoxylin and Eosin (H&E) to observe histologically by using light microscope. Of all examined abomasa, 66.7% (160/240) were infected with five species of adult nematodes including Marshallagia marshalli (43.65%), Ostertagia circumcincta (15.5%), Parabronema skrjabini (5%), M. occidentalis (2.5%), and Haemonchus contortus (0.04%). Histologically, there was hyperplasia and thickness of the mucosa and elongation of nodes with loss of parietal cells and replacement of mucous secreting cells. The severe infiltration of inflammatory cells, particularly Eosinophiles in parin connective tissue of mucosa and around the abomasal nodes as well as a few larvae sections elucidated chronic hypertrophic gastritis. From the results of histologic changes due to helminths infection in abomasa of examined sheep, it was concluded further studies are necessary to identify and decrease economic losses in the region.

کلیدواژه‌ها [English]

  • Histopathology
  • Abomasum
  • Nematode
  • Sheep
1- AL-Dahar, A. H.H. and A. M. A. AL-Amery. 2015. A prevalence of abomasal worms in sheep in AL-Kut province abattoir. The Iraqi Journal of Veterinary Medicine 39: 38-41.
2- Amniattalab, A., S. Rasouli and M. Saebnajjar. 2014. Seasonal prevalence and pathological changes of Ostertagiasis in abomasum of slaughtered sheep in Khoy city in Iran. Advances in Environmental Biology 8: 1096-1102.
3- Argaw, S., D. Beyene and B. Abebe. 2014. Prevalence of abomasal nematodes in sheep and goats slaughtered at Haramaya municipal abattoir, eastern Hararghe, Ethiopia. Journal of Biology, Agriculture and Healthcare 2: 81-88. 
4- Azizi, H. R., G.A. Kojouri, H. Nourani, C. Hoamaie and M. Rafian. 2009. A survey on prevalence, species and pathologic lesions of Ostertagia among slaughtered sheep in Shahrekord region (Southwestern of Iran). Veterinary Journal (Pajouhesh & Sazandegi) 84: 55-61. (In Farsi)
5- Bancroft, J.D. and M. Gamble. 2001. Theory and practice of histological techniques. (5th ed.). Churchill Livingstone Publishers. Edinburgh.
6- Blanchard, J. L., A. M. Gallina and  R. B. Wescott. 1986. Pathologic changes in lambs with Ostertagia circumcincta infections associated with decreased infectivity of Haemonchus contortus. American Journal Veterinary Research 47: 309-314. 
7- Borgsteede, F. N.M. 1981. Experimental cross-infection with gastrointestinal nematodes of sheep and cattle. Zeitschrift  für  Parasitenkunde 65: 1-10. 
8- Coop, R. L., J. F. Huntley and W.D. Smith. 1995. Effect of dietary-protein supplementation on the development of immunity to Ostertagia circumcinctain growing lambs. Research in Veterinary Science 59: 24–29. 
9- Coop, R. L. and I. Kyriazakis. 1999. Nutrition–parasite interaction. Veterinary Parasitology 84: 187–204. 
10- Eslami, A., M. Meydani, S.H. Maleki and A. Zargarzadeh. 1979. Gastrointestinal nematodes of wild sheep (Ovis orientalis) from Iran. Journal of Wildlife Diseases 15: 263-365. 
11- Eslami, A., S. Rahbari and S. Nikbin. 1980. Gastrointestinal nematodes of gazelle, Gazella subgutturosa in Iran. Veterinary Parasitology 7: 75-78. 
12- Eslami, A. 1997. Veterinary helminthology: Nematodes and Acantocephala (2nd ed.). University of Tehran, Tehran.
13- Farshid, A.A.,  S. Naem  and R. Banaie Alipo. 2006. Pathological changes of abomasum in naturally infected Makoyee sheep with Teladorsagia circumcincta. Pakistan Journal of Biological Sciences 9: 2145-2148. 
14- Hassan, H.F., A. Kadir and R. A. Barzinji. 2018. Prevalence of ruminants gastro-intestinal parasites in Kirkuk province, Iraq. Kirkuk University Journal/Scientific Studies 13: 96-108.
15- Khodakaram-Tafti, A., A. Hajimohammadi and F. Amiri. 2015. Prevalence and pathology of abomasal abnormalities in sheep in southern Iran. Bulgarian Journal of Veterinary Medicine 18: 270–276. 
16- Kienan, V. A. 2002. Histological and histochemical methods, theory and practice. (5th ed.). Churchill Livingston, Edinburgh.
17- Nabavi, L. and H. Najafzadeh. 2010. Identification of mature and immature nematode species of gastrointestinal tract of sheep raised in Khouzestan province in Ahvaz abattoir. Journal of Health and Livestock Diseases 4:65-73. 
18- Nabavi, R., A. Eslami, H. R. Shokrani, S. Bokaie, P. Shayan and D. Saadati. 2011. Study on the prevalence, intensity, seasonal dynamics of abomasal helminths in sheep from different climatic zones of Iran. World Applied Sciences Journal 12: 441-445. 
19- Pavlovic, I., S. Ivanovo, G. Zugic, D. Jovcic, J. Bojkovski and M. Pajic. 2012. Season distribution of gastrointestinal helminths of small ruminants in spread Belgrade area. Lucrari Stiintifice Medicina Veterinara Timisoara 19:155-160.
20- Scott, I., S. Khalaf, D.C. Simcock, C.G. Knight, G. W. Reynolds, W. E. Pomry and H.V. Simpson. 2000. A sequential study of the pathology with the infection of sheep with adult and larval Ostertagia circumcincta. Veterinary Parasitology 89: 79–94. 
21-Simpson, H.V., B. H. Simpson, D.C. Simcock, G.W. Reynolds and W. E. Pomroy. 1999. Abomasal secretion in sheep receiving adult Ostertagia circumcincta that are prevented from contact with the mucosa. New Zealand Veterinary Journal 47: 20-24. 
22- Soulsby, E.J.L. 1986. Helminthes, Arthropods and Protozoa of domesticated animals. Lea & Febiger, (8th ed.). ELBS, Philadelphia, London.
23- Stear, M. J., S. Strain and S.C. Bishop. 1999. How lambs control infection with Ostertagia circumcincta. Veterinary Immunology and Immunopathology 72: 213-218. 
24- Stear, M. J., K. Bairden, J.L. Duncan, P. D. Eckersall, G. Fishwick, P. A. Graham, P. H. Holmes,  Q. A. McKellar, S. Mitchell,  M. Murray, J. J. Parkins and D. S. Wallace. 2000. The influence of relative resistance and urea-supplementation on deliberate infection with Teladorsagia circumcincta during winter. Veterinary Parasitology 94:245–54. 
25- Stear, M., D. Piedrafita, S. Sloan, D. Alenizi, C. Cairns and C. Jenvey. 2019. Teladorsagia circumcincta. Wiki Journal of Science 2: 1-6.  
26- Tasawar, Z., F. Naz, M.H. Lashari and C.S. Hayat. 2011. Prevalence of Ostertagia spp., in a sheep herd. Sarhad Journal of Agriculture  27: 275-278.
27- Zendeh-Dell, H., M. Norouzi and Z. Salimi. 2000. Comprehensive guide of tourism in Ilam Province (1st ed.), Iran Gardan publication, Tehran.